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主要测试模式:
FMS可对麻醉动物进行一系列成组实验,自动检测并实时数据分析,获得相应肺功能生理参数。
性能及优势:
· FMS系统是COPD、急性肺损伤、肺间质疾病等研究的必备工具,广泛适用于多种肺部疾病模型临床前研究;
· 经典的肺量测定法(Spirometry)检测FRC功能残气量、FEV、FVC用力肺活量、准静态肺顺应性、TLC肺总量、IC吸气能力、MMEF平均呼气中期流量等直接生理数据,与人类医学肺功能检测的各种肺功能指标基本一致,是目前检测指标最完整的动物肺功能检测系统;
· 适用于多种实验动物,内置金属正负压力储能器可适应更大压力范围,检测更大动物无需更换主机;
· FRC、F-V、P-V多个测试组合可在五分钟内完成并输出丰富的指标数据;
· 可持续输出气道阻力Rl、动态肺顺应性Cdyn、潮气量等平静呼吸功能数据;
· 检测跨肺压(胸腔内压)从而得到更精确的数据结果,排除呼吸机等的外部因素影响;
· 检测中允许使用呼吸机和不使用呼吸机两种方式,标配为不使用呼吸机,以得到更真实的潮气量和呼吸频率等数据结果;
· 主机内置小型计算机处理原始数据,数据采样率高达60kHz;
· 数据立即呈现,无须等待;多种图形及统计分析数据可供导出;
· 数据传输和指令传达采用不同串口连线,避免了大量数据双向传输引起缓冲池溢出故障;
· 可外接氧气、CO、CO2、氮气以及其它各种气体以满足多种实验方案;
· 符合GLP及FDA Final Rule 21 CFR Part 11相关标准。
检测参数:
RC测试
呼吸频率、潮气量、分钟通气量、气道阻力、动态肺顺应性、压力变化、吸气流速峰值、呼气流速峰值、呼吸时间、分钟通气量等
F-V测试
用力呼气容积FEVx、用力肺活量FVC、呼气峰值流速PEF、呼气中值流速MMEF、用
力呼气流速FEFx、FEV/PEF等
RRC测试
功能残气量FRC、残气量RC、压力差DeltaP、容积差DeltaV、死腔DeadSp等
P-V测试
吸气量IC、肺活量VC、肺总量TLC、准静态顺应性(Cmax、Cchord、Cfvc50、C_P0)等
应用领域:
上图为利用eSpira™系统在慢性哮喘小鼠模型上获取的数据。小鼠通过卵清蛋白(OVA)激发致敏,对照组只注射明矾和缓冲液。在最后一次激发24小时后进行肺功能检测。 如图,FVC降低了49%,FEV50降低了46%。数据表明eSpira™系统用于小鼠哮喘模型,可以有效的检测肺功能的改变。
通过 ePacq(EMMS Post Acquisition)分析软件应用程序为数据审查和呈现提供了完整的解决方案。ePacq 使研究人员可以即时访问使用 EMMS eDacq 记录的数据,以表格和图形格式显示数据。
ePacq 显示分析的原始数据
ePacq 可用于将大型数据集压缩成更易于管理的东西。这种数据压缩的传统技术将涉及编写冗长的 Excel 表格。这种方法既费时又容易出错。ePacq 通过提供快速简便的实验数据总结消除了这些问题。
· 特定时间段内的个体受试者数据
· 治疗组统计,包括平均值、最大值、最小值、标准差、SEM
· 研究统计数据,所有治疗组的平均数据。
ePacq 显示分析的协议数据
如需无创方式检测小动物的肺功能参数,可选择:
全身体积描记系统
如需检测小动物的气道阻力,可选择:
小动物气道阻力和肺顺应性检测系统
参考文献:
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2.Wang, J., et al., Macrophage-derived GPNMB trapped by fibrotic extracellular matrix promotes pulmonary fibrosis. Communications Biology, 2023. 6(1): p. 136.
3.Han, L., et al., Tracking the response to Pseudomonas aeruginosa infection in ozone-induced chronic obstructive pulmonary disease mouse models. Biomedicine & Pharmacotherapy, 2022. 150: p. 112980.
4.Zhang, Y., et al., Adipose-derived mesenchymal stem cells suppress ozone-mediated airway inflammation in a mouse model of chronic obstructive pulmonary disease. Molecular Immunology, 2022. 151: p. 95-102.
5.Yu, J., et al., Astragaloside trigger autophagy: Implication a potential therapeutic strategy for pulmonary fibrosis. Biomedicine & Pharmacotherapy, 2022. 154: p. 113603.
6.Wang, M., et al., Blockade of phosphotyrosine pathways suggesting SH2 superbinder as a novel therapy for pulmonary fibrosis. Theranostics, 2022. 12(10): p. 4513.
7.Kim, H., et al., Comprehensive Targeted Metabolomic Study in the Lung, Plasma, and Urine of PPE/LPS-Induced COPD Mice Model. International Journal of Molecular Sciences, 2022. 23(5): p. 2748.
8.Chen, D., et al., Fine particulate matter and lung function among burning-exposed deepwater horizon oil spill workers. Environmental Health Perspectives, 2022. 130(2): p. 027001.
9.Li, Q., et al., Inhibition of ROCK ameliorates pulmonary fibrosis by suppressing M2 macrophage polarisation through phosphorylation of STAT3. Clinical and Translational Medicine, 2022. 12(10): p. e1036.
10.Capristán Morales, A.E., Hernia hiatal asociado a infección por Helicobacter Pylori en un Hospital de primer nivel de atención. 2022.
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